Методы регенерации костной ткани челюстей

Методы регенерации костной ткани челюстей

Методы регенерации костной ткани челюстей
Только у нас: Введите до 31.03.2020 промокод бонус2020 в поле купон при оформлении заказа и получите скидку 25% на всё!

хирургии поиск путей оптимизации

репаративного остеогенеза также связан

с развитием дентальной имплантологии…

Восстановление дефектов костной ткани нижней челюсти является одной из наиболее актуальных проблем современной стоматологии и ортопедии. Причины потери костной ткани разнообразны: удаление зубов, воспалительные процессы, травмы, опухоли, остеопороз.

В ряде случаев в стоматологической практике процесс ортопедической реабилитации связан с необходимостью заживления костных дефектов нижней челюсти.

В связи с этим поиск оптимального материала для пластического замещения дефектов нижней челюсти является актуальным.

В последние годы широкое распространение получили методы клеточной терапии, основанные на применении остеогенных клеток, полученных из различных тканевых источников: костного мозга, жировой ткани [4], пульпы зуба, периферической крови и т.д. [1]. По мере накопления и анализа данных, касающиеся клеточной инженерии формируется новое направление: разработка различных конструкций по своим биологическим свойствам, приближающимся к нативной костной ткани [2, 3].

Совершенно очевидно, что использование тканеинженерных конструкции должно быть четко аргументировано в зависимости от характера, типа и локализации повреждения.

В связи с этим, накопленный в настоящее время достаточно обширный материал нуждается в дальнейших экспериментальных и клинических подтверждениях эффективности конструкций и выработке четких показаний к их использованию.

Одним из требований к пластическому материалу при ортопедической и любой другой патологии является тканеспецифичность, отсутствие токсичности, высокий регенераторный потенциал и формирование органоспецифической ткани в зоне трансплантации [5].

Выбор пластического материала для замещения дефекта костной ткани связан особенностями гистогенеза нижней челюсти. Известно, что в процессе эмбрионального развития и при регенерации костная ткань формируется на основе десмального остеогенеза.

Подобным требованиям отвечает разработанный в Новосибирском научно-исследовательском институте травматологии и ортопедии им. Я.Л.Цивьяна трехмерный остеотрансплантат. Структурная композиция трехмерного остеотрансплантата представлена клетками, матриксом и сосудами, что обеспечивает быструю адаптацию в условиях трансплантации.

Преимуществом остеотрансплантата являются: отсутствие антигенной активности, что позволяет производить ксенотрансплантацию.

Цель: исследовать остеорегенераторные потенции остеотрансплантата при замещении дефекта костной ткани нижней челюсти в эксперименте.

Материалы и методы

Исследование выполнено на животных с соблюдением положений Хельсинской декларации Всемирной медицинской ассоциации и Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных (утв. Приказом Министерства Здравоохранения Российской Федерации от 19.03.2003 г. №226).

Материалом для культивирования служили хондробласты, извлеченные в стерильных условиях из позвоночника новорожденного мини – поросенка. В стерильных условиях выделяют пластинки роста тел позвонков. Пластинки роста дважды промывают раствором фосфатного буфера и измельчаются в чашке Петри скальпелем.

Кусочки переносятся в пробирки с раствором 1,5 % коллагеназы в среде RPMI 1640 с добавлением 20% S. Инкубируют в течение 12 часов. Далее суспензию дважды промывают от коллагеназы раствором фосфатного буфера. Клетки ресуспензируют в PBS.

Жизнеспособность клеток хондробластов оценивают с помощью красителя трипанового синего в счетной камере Горяева.

Выделенные хондробласты культивируют в условиях инкубатора при 37°С при 90% влажности и 5% СО2 в чашках Петри в культуральной среде RPMI 1640 с добавлением 20% S и гентамицином 1 г/л в течение 3-4 недель.

Далее производят пассирование клеток с помощью смеси растворов 0,25% трипсина и 0,02% раствора ЭДТА. Клетки центрифугируют при 2000 об/мин в течение 10 минут. Клеточный агрегат культивируют в 6-луночном планшете с питательной средой 10% S в течение 4-6 недель.

Смену среды осуществляли 2 раза в неделю до получения хондротрансплантата.

Остеогенную дифференцировку хондротрансплантата производили путем помещения в питательную среду, содержащую индукторы остеогенной дифференцировки: 10 милимоль/л ß-глицерофосфа, 100 наномоль/л дксаметазона и 0,2 милимоль/л аскорбиновой кислоты.

Остеогенную дифференцировку трансплантата подтверждали методами традиционной морфологии, гитстохимии.

Основными структурными компонентами трехмерного остеотрансплантата являются остеогенные клетки (остеобласты), предкостный матрикс, содержащий гидроксиаппатит, коллаген I типа и протеогликаны. Наличие сформированных каппилляров является фактором быстрой остеоинтеграции в условиях трансплантации.

Благодаря данным особенностям трехмерный остеотрансплантат обладает потенциями к формированию диффинитивной костной ткани.

Экспериментальная проверка регенераторных потенций остеотрансплантата выполнена на 10 самцах крыс линии Wistar, возрастом 1 месяц. Под общим наркозом, скальпелем произвели разрез 5 мм в проекции угла нижней челюсти. Распатором отслоили жевательную мышцу – обнажили кость.

При помощи твердосплавного шаровидного бора, с вестибулярной поверхности ветви нижней челюсти на расстоянии 3 мм выше угла нижней челюсти, сформировали трепанационное отверстие диаметром 1 мм. Животным I группы дефект заполняли трехмерным остеотрансплантатом диаметром 1,2 мм.

За счет трехмерной структуры и упруго эластических свойств остеотрансплантат плотно прилегал к стенкам артифициального дефекта. Замещенный трехмерный остеотрансплантатом дефект закрывали фасцией и жевательной мышцей.

Десяти животным контрольной группы формировали трепанационное отверстие диаметром 1 мм, и закрывали фасцией и жевательной мышцей, не заполняя дефект. Рану ушили материалом «Vicryl».

Животных выводили из эксперимента через 2 недели, 1, 3, 6 месяцев. Визуально оценивали наличие остаточного дефекта и выраженность гипертрофии мягких и костных тканей в области трансплантации. Зону трансплантации исследовали рентгенологически.

Препараты нижней челюсти фиксировали в 10% нейтральном формалине, декальцинировали в трилоне «Б», после проводки заливали в парафин и окрашивали гематоксилинэозином и по Ван Гизону.

Оценку процесса репаративного остеогенеза проводили под микроскопом «Carl Zeiss».

Через 2 недели эксперимента (рис 1) зона бывшего дефекта заполнена остеогенной тканью, среди которой сформированы первичные костные структуры. Вокруг первичных костных балочек располагаются активные остеобласты в виде цепочек.

Межбалочное пространство занято остеобластами на разной стадии дифференцировки и сосудистыми полостями, выстланными эндотелием.

Зона трансплантации окружена костной тканью с признаками активации остеогенеза: на внутренней поверхности костных балок располагаются активные остеобласты.

Через 1 месяц эксперимента (рис.2) в зоне трансплантации сформирована примитивная костная ткань балочного строения. Между балками располагается костный мозг и сосуды, заполненные эритроцитами. Костные балки имеют мозаичное строение.

Участки более зрелой костной ткани с регулярным расположением остеобластов и линиями склеивания чередуются с зонами примитивной костной ткани. Остеобласты располагаются нерегулярно, матрикс гомогенный, линии склеивания отсутствуют. Костные структуры окружены цепочками остеобластов.

Активный процесс остеогенеза продолжается.

Через 3 месяца эксперимента (рис.3) зона трансплантации заполнена костной тканью балочного строения. В некоторых участках процесс трансформации в органоспецифическую костную ткань все еще не завершен.

Участки примитивной костной ткани располагаются среди зрелых структур. Процесс остеогенеза еще не закончен. Вокруг костных балок располагаются активные остеобласты.

Между костными структурами сформированы очаги костного мозга.

Через 6 месяцев эксперимента (рис.4) в области пластического замещения дефекта остеотрансплантатом образовался единый костный массив. Зона трансплантации слилась с материнским ложем, границы бывшего дефекта установить невозможно.

В центре сформированной костной ткани происходит процесс ремоделирования в пластинчатую костную ткань органоспецифичную для нижней челюсти.

На поверхности располагается костная пластинка зрелого строения, в центральных отделах более зрелые структуры чередуются с участками в состоянии ремоделирования.

Через 6 месяцев эксперимента (контроль) (рис.5) артифициальная полость заполнена соединительно-тканным регенератом плотноклеточной структуры, между фибробластами и единичными сосудами располагаются коллагеновые волокна. Процесс костеобразования отсутствует.

Рис 1. Зона бывшего дефекта заполнена примитивной костной и остеогенной тканью. Гематоксилин-эозин х 400

science-education.ru

Читай также:

Рассасывается костная ткань на десне .   Аугментация костной ткани в стоматологии это .   Разрастание костной ткани что это такое .   Уменьшение костной ткани передних зубов .   Как укрепить костную ткань десен .  

Только у нас: Введите до 31.03.2020 промокод бонус2020 в поле купон при оформлении заказа и получите скидку 25% на всё!

Источник: https://zdorovie-ok.ru/metody-regeneracii-kostnoj-tkani-chelyustej/

Суть и цель методики направленной костной регенерации

Методы регенерации костной ткани челюстей

1711

Дефекты зубного ряда доставляют огромный дискомфорт и проблемы. Если своевременно не принять соответствующие меры, то последствия могут быть еще хуже.

При длительном отсутствии механического давления на костные ткани, челюсти деградируют, и проведение имплантации не представляется возможным.

Одним из решений является наращивание недостающей костной ткани в области проведения протезирования.

Общее представление

Направленная тканевая регенерация – метод, позволяющий восстановить твердые ткани челюсти. Разрабатывался как хирургическое направление в стоматологии, является одним из этапов при имплантации.

Основой этого способа стала возможность задать необходимые параметры путем установления барьерных мембран, которые отделяют кость от мягких тканей.

Это позволяет устранить вероятность врастания клеток мягких тканей между частицами восстанавливающего вещества, что позволяет осуществить процедуру наиболее эффективным образом.

Первые успешные шаги в данном направлении были осуществлены в 1983 году исследовательской командой Ньюмана. Далее развитие исследований продолжалось и в 1988 году опыты на животных с использованием нерезорбируемых материалов принесли успех. Был разработан метод, позволяющий восстанавливать кости челюсти при имплантации.

Использование подобных материалов нашло широкое применение в стоматологии и позволило повысить эффективность не только имплантационной хирургии, но и других направлений.

Например, подготовка к стоматологическим манипуляциям, требующая наращивания кости. В дальнейшем метод получил название направленная костная регенерация.

Материалом для восстановления служат два вида мембранных элементов резорбируемого и нерезорбируемого типа. Они отличаются друг от друга тем, что первые рассасываются в период до полугода, а вторые необходимо извлекать.

Применяемые материалы

На челюстные кости постоянно осуществляется давление за счет выполнения жевательных функций. В связи с этим кость имеет большую плотность там, куда осуществляется большее давление.

При нарушении, нагрузка ослабевает, в том числе за счет перераспределения давления после потери зуба. Это приводит к тому, что костные ткани на этом участке истончаются и становятся более хрупкими.

Именно в таких случаях требуется проведение восстановительных процедур с использованием остеоиндуктивных веществ. Они призваны заместить деградировавшие участки, и способствую росту ткани.

Чаще всего в состав таких препаратов входят костные белковые молекулы, имеющие похожее строение. Они запускают механизм регенерации.

Чтобы наладить кровоснабжение восстанавливаемых участков, применяют мембранные элементы. Чаще всего это – мембраны из коллагена двух слоев, обработанных регенерирующими составами.

Это позволяет наиболее эффективно запустить рост и развитие поврежденных участков костей челюсти. Часто гранулы костного вещества совмещают с гидроксиапатитными соединениями и мембранными барьерами.

Помимо этого, используются методики направленной регенерации костей челюсти с использованием биологически активных соединений и различных дистрактирующих препаратов. В любом случае, врач осуществляет выбор метода лечения, исходя из особенностей строения челюсти и характера повреждения.

Чтобы получить наилучший результат при процедуре используют комбинирование различных материалов: костная ткань, кровяные клетки и т.д.

Такие смеси ускоряют приживаемость, активируют регенерацию. Кровяные клетки, добавленные в измельченные костные гранулы, позволяют достичь наибольшего успеха, что способствует распространению данного метода.

Использование резорбируемых мембран

Главным преимуществом мембранных элементов резорбируемого типа является то, что они самостоятельно рассасываются с течением времени, их не нужно извлекать путем дополнительного вмешательства. Это дает возможность ускорить регенерирующие процессы.

Подобные элементы легко использовать, они не требуют специальных условий. Во влажном состоянии они легко пристают к нужному участку и фиксируются.

Главным минусом использования является то, что такие конструкции не позволяют восстанавливать обширные участки поврежденных тканей, а лишь зоны до двух миллиметров. Это уменьшает сферу их применения.

В связи с этим формируется меньший размер костной ткани и осложняется возможность формирования правильных форм конкретных участков.

Основными направлениями применения подобных материалов становится ограждение участка, где проводится операция, а также формирование биобарьера в зоне надреза.

По горизонтали проводить регенерацию с помощью материалов резорбируемого типа довольно сложно. Это связано с описанным выше недостатком, который не позволяет сохранять большой объем. Допустимый предел использования не больше полутора-двух миллиметров. На верхней челюсти использование таких мембран более предпочтительно.

По вертикали данные элементы применимы только тогда, когда имеют место щелевые отверстия в местах имплантации шириной до трех миллиметров. Но при этом не будет образована полноценная кость, так как будут присутствовать участки других тканей.

Основным преимуществом рассасываемой мембраны перед остальными типами является ускоренное заживление мягких тканей.

При этом большим недостатком является возможность деградации и разрушения восстановленных участков костной ткани.

Преимущества нерезорбируемых пластин

Мембранные элементы нерезорбируемого типа — наиболее эффективное средство при регенерации костных тканей.

Главным преимуществом является то, что использование таких материалов дает возможность сформировать кость с нужными параметрами и характеристиками.

По своей конструкции они делятся на бескаркасные и каркасные с титановыми элементами. Каркас способствует формирование четких границ, препятствующих дальнейшему разрушению конструкции.

Такие элементы применяются, когда необходимо восстановить обширные участки как на вертикальных, так и горизонтальных плоскостях.

По горизонтали такие мембраны позволяют очень легко восстанавливать поврежденные структуры. При этом можно использовать различные вещества, замещающие костную ткань.

Если восстановить нужно участки объемом более четырех миллиметров, то обязательно применяется каркас, который позволит защитить восстанавливаемую область.

Процесс фиксации

Рассмотрим основные этапы по установке нерассасываемой мембраны. Чаще всего, происходит следующие манипуляции.

Отслоение надкостничного лоскута

Врач должен понимать, что осуществляемое надрезание тканей должно проводиться таким образом, чтобы фиксируемая мембрана не касалась корневой части зуба.

Иначе это может привести к тому, что мягкие ткани будут плохо восстанавливаться, что будет способствовать попаданию болезнетворных бактерий и развитию воспалительных процессов.

Правильно установленная мембрана обеспечит быстрое заживление и достаточный объем восстановленной костной ткани. При этом наиболее правильно фиксировать мембрану на удалении четырех миллиметров от корня.

Это означает, что запущенные случаи деградации и разрушения костной ткани невозможно устранить при помощи направленной регенерации тканей.

При формировании лоскутных участков необходимо учитывать специфику мягких тканей пациента, а также параметры восстановления костных тканей. Это позволит наилучшим образом подобрать размер мембраны, а также повысить эффективность терапии.

В целом от того, как выполнен надрез и сформирован лоскут зависит успешность проводимой манипуляции.

Декортикация поверхности ложа

Декортикационные мероприятия на участках, куда будет фиксироваться элемент производятся фиссурами или шарообразными борами небольших габаритов. Также могут применяться тоненькие сверла.

При проведении процедуры специалист должен чувствовать этапы прохождения инструмента через костную ткань. В некоторых случаях приходится сохранять отдельные участки и слои в зависимости от условий операции.

Мероприятия проводятся с целью обеспечить свободное движение и доступ восстанавливающих препаратов в пораженную область. Также без этого невозможно обеспечить нормальный кровоток.

Фиксация мембраны

Конструкция фиксируется с малозаметной стороны винтами из титана. После того как закреплена одна сторона, происходит введение регенерирующих препаратов. Затем фиксируется вторая сторона.

При фиксации важно обеспечить максимально плотное прилегание. Если это не обеспечить, то в складках начнет прорастать мягкая ткань, что снизит успех процедуры.

Ушивание мягких тканей

При ушивании лоскутов над мембранными элементами важно наиболее точно сопоставить границы надрезов. При этом при накладывании швов нужно использовать нити наименьшей толщины.

Именно такой подход позволит уберечь прооперированные участки от попадания бактерий и развития воспаления.

Асептика

Проведение обеззараживающих мероприятий особенно важно при подобных операциях, так как помимо внешней раны внутрь устанавливается инородной тело. Поэтому важно обеспечить защиту от вредоносных бактерий.

Постоперационные рекомендации

После проведения операции врач назначает прием антибиотиков, антивоспалительных препаратов и антигистамины.

Также важно следить за гигиеной полости рта и регулярно полоскать антибактериальными растворами.

В видео смотрите, как проводится направленная костная регенерация.

Выводы

Таким образом, можно отметить, что применение нерезорбируемых мембран позволяет достичь больших результатов в области восстановления костной ткани челюсти.

Даже при больших поражениях за счет использования титанового каркаса можно восстановить обширные участки тканей.

Проведенные процедуры дают возможность имплантации в укрепленную кость зубных дентальных конструкций.

, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Источник: http://www.vash-dentist.ru/implantatsiya/metodiki/napravlennoy-kostnoy-regeneratsii.html

Регенерация костной ткани нижней челюсти методом тканевой инженерии – современные проблемы науки и образования (научный журнал)

Методы регенерации костной ткани челюстей
В стоматологии и челюстно-лицевой

хирургии поиск путей оптимизации

репаративного остеогенеза также связан

 с развитием дентальной имплантологии…

Иорданишвили А.К.

Восстановление дефектов костной ткани нижней челюсти является одной из наиболее актуальных проблем современной стоматологии и ортопедии. Причины потери костной ткани разнообразны: удаление зубов, воспалительные процессы, травмы, опухоли, остеопороз.

В ряде случаев в стоматологической практике процесс ортопедической реабилитации связан с необходимостью заживления костных дефектов нижней челюсти.

В связи с этим поиск оптимального материала для пластического замещения дефектов нижней челюсти является актуальным.

В последние годы широкое распространение получили методы клеточной терапии, основанные на применении остеогенных клеток, полученных из различных тканевых источников: костного мозга, жировой ткани [4], пульпы зуба, периферической крови и т.д. [1]. По мере накопления и анализа данных, касающиеся клеточной инженерии формируется новое направление: разработка различных конструкций по своим биологическим свойствам, приближающимся к нативной костной ткани [2, 3].

Совершенно очевидно, что использование тканеинженерных конструкции должно быть четко аргументировано в зависимости от характера, типа и локализации повреждения.

В связи с этим, накопленный в настоящее время достаточно обширный материал нуждается в дальнейших экспериментальных и клинических подтверждениях эффективности конструкций и выработке четких показаний к их использованию.

Одним из требований к пластическому материалу при ортопедической и любой другой патологии является тканеспецифичность, отсутствие токсичности, высокий регенераторный потенциал и формирование органоспецифической ткани в зоне трансплантации [5].

Выбор пластического материала для замещения дефекта костной ткани связан особенностями гистогенеза нижней челюсти. Известно, что в процессе эмбрионального развития и при регенерации костная ткань формируется на основе десмального остеогенеза.

Подобным требованиям отвечает разработанный в Новосибирском научно-исследовательском институте травматологии и ортопедии им. Я.Л.Цивьяна трехмерный остеотрансплантат. Структурная композиция трехмерного остеотрансплантата представлена клетками, матриксом и сосудами, что обеспечивает быструю адаптацию в условиях трансплантации.

Преимуществом остеотрансплантата являются: отсутствие антигенной активности, что позволяет производить ксенотрансплантацию.

Цель: исследовать остеорегенераторные потенции остеотрансплантата при замещении дефекта костной ткани нижней челюсти в эксперименте.

Материалы и методы

Исследование выполнено на животных с соблюдением положений Хельсинской декларации Всемирной медицинской ассоциации и Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных (утв. Приказом Министерства Здравоохранения Российской Федерации от 19.03.2003 г. №226).

Материалом для культивирования служили хондробласты, извлеченные в стерильных условиях из позвоночника новорожденного мини – поросенка. В стерильных условиях выделяют пластинки роста тел позвонков. Пластинки роста дважды промывают раствором фосфатного буфера и измельчаются в чашке Петри скальпелем.

Кусочки переносятся в пробирки с раствором 1,5 % коллагеназы в среде RPMI 1640 с добавлением 20% S. Инкубируют в течение 12 часов. Далее суспензию дважды промывают от коллагеназы раствором фосфатного буфера. Клетки ресуспензируют в PBS.

Жизнеспособность клеток хондробластов оценивают с помощью красителя трипанового синего в счетной камере Горяева.

Выделенные хондробласты культивируют в условиях инкубатора при 37°С при 90% влажности и 5% СО2 в чашках Петри в культуральной среде RPMI 1640 с добавлением 20% S и гентамицином 1 г/л в течение 3-4 недель.

Далее производят пассирование клеток с помощью смеси растворов 0,25% трипсина и 0,02% раствора ЭДТА. Клетки центрифугируют при 2000 об/мин в течение 10 минут. Клеточный агрегат культивируют в 6-луночном планшете с питательной средой 10% S в течение 4-6 недель.

Смену среды осуществляли 2 раза в неделю до получения хондротрансплантата.

Остеогенную дифференцировку хондротрансплантата производили путем помещения в питательную среду, содержащую индукторы остеогенной дифференцировки: 10 милимоль/л ß-глицерофосфа, 100 наномоль/л дксаметазона и 0,2 милимоль/л аскорбиновой кислоты.

Остеогенную дифференцировку трансплантата подтверждали методами традиционной морфологии, гитстохимии.

Основными структурными компонентами трехмерного остеотрансплантата являются остеогенные клетки (остеобласты), предкостный матрикс, содержащий гидроксиаппатит, коллаген I типа и протеогликаны. Наличие сформированных каппилляров является фактором быстрой остеоинтеграции в условиях трансплантации.

Благодаря данным особенностям трехмерный остеотрансплантат обладает потенциями к формированию диффинитивной костной ткани.

Экспериментальная проверка регенераторных потенций остеотрансплантата выполнена на 10 самцах крыс линии Wistar, возрастом 1 месяц. Под общим наркозом, скальпелем произвели разрез 5 мм в проекции угла нижней челюсти. Распатором отслоили жевательную мышцу – обнажили кость.

При помощи твердосплавного шаровидного бора, с вестибулярной поверхности ветви нижней челюсти на расстоянии 3 мм выше угла нижней челюсти, сформировали трепанационное отверстие диаметром 1 мм. Животным I группы дефект заполняли трехмерным остеотрансплантатом диаметром 1,2 мм.

За счет  трехмерной структуры и упруго эластических свойств остеотрансплантат плотно прилегал к стенкам артифициального дефекта. Замещенный трехмерный остеотрансплантатом дефект закрывали фасцией и жевательной мышцей.

Десяти животным контрольной группы формировали трепанационное отверстие диаметром 1 мм, и закрывали фасцией и жевательной мышцей, не заполняя дефект. Рану ушили материалом «Vicryl».

Животных выводили из эксперимента через 2 недели, 1, 3, 6 месяцев. Визуально оценивали наличие остаточного дефекта и выраженность гипертрофии мягких и костных тканей в области трансплантации. Зону трансплантации исследовали рентгенологически.

Препараты нижней челюсти фиксировали в 10% нейтральном формалине, декальцинировали в трилоне «Б», после проводки заливали в парафин и окрашивали гематоксилинэозином и по Ван Гизону.

Оценку процесса репаративного остеогенеза проводили под микроскопом «Carl Zeiss».

Результаты исследования

Через 2 недели эксперимента (рис 1) зона бывшего дефекта заполнена остеогенной тканью, среди которой сформированы первичные костные структуры. Вокруг первичных костных балочек располагаются активные остеобласты в виде цепочек.

Межбалочное пространство занято остеобластами на разной стадии дифференцировки и сосудистыми полостями, выстланными эндотелием.

Зона трансплантации окружена костной тканью с признаками активации остеогенеза: на внутренней поверхности костных балок располагаются активные остеобласты.

Через 1 месяц эксперимента (рис.2) в зоне трансплантации сформирована примитивная костная ткань балочного строения. Между балками располагается костный мозг и сосуды, заполненные эритроцитами. Костные балки имеют мозаичное строение.

Участки более зрелой костной ткани с регулярным расположением остеобластов и линиями склеивания чередуются с зонами примитивной костной ткани. Остеобласты располагаются нерегулярно, матрикс гомогенный, линии склеивания отсутствуют. Костные структуры окружены цепочками остеобластов.

Активный процесс остеогенеза продолжается.

Через 3 месяца эксперимента (рис.3) зона трансплантации заполнена костной тканью балочного строения. В некоторых участках процесс трансформации в органоспецифическую костную ткань все еще не завершен.

Участки примитивной костной ткани располагаются среди зрелых структур. Процесс остеогенеза еще не закончен. Вокруг костных балок располагаются активные остеобласты.

Между костными структурами сформированы очаги костного мозга.

Через 6 месяцев эксперимента (рис.4) в области пластического замещения дефекта остеотрансплантатом образовался единый костный массив. Зона трансплантации слилась с материнским ложем, границы бывшего дефекта установить невозможно.

В центре сформированной костной ткани происходит процесс ремоделирования в пластинчатую костную ткань органоспецифичную для нижней челюсти.

На поверхности располагается костная пластинка зрелого строения, в центральных отделах более зрелые структуры чередуются с участками в состоянии ремоделирования.

Через 6 месяцев эксперимента (контроль) (рис.5) артифициальная полость заполнена соединительно-тканным регенератом плотноклеточной структуры, между фибробластами и единичными сосудами располагаются коллагеновые волокна. Процесс костеобразования отсутствует.

Рис 1. Зона бывшего дефекта заполнена примитивной костной и остеогенной тканью. Гематоксилин-эозин х 400

Рис. 2. Костная ткань балочного строения, костные балки окружены цепочками остеобластов с элементами костного мозга между балками. Гематоксилин-эозин х 200

Рис.3. В области артифициального дефекта располагается молодая костная ткань балочного строения. Гематоксилин-эозин х 400

                             

Рич.4. Дефект заполнен органоспецифичес-кой костной тканью. Наблюдается полная интеграция материнского ложа со сформи-рованной костной тканью на основе остео-трансплантата. Гематоксилин-эозин х 400

Рис.5. Область бывшего артифициального дефекта заполнена соединительной тканью, редкими кровеносными сосудами. Гематоксилин-эозин х 200

Заключение

Замещение дефекта костной ткани нижней челюсти остеотрансплантатом обеспечивает быструю регенерацию на основе остеогенных структурных компонентов пластического материала: остеобластов синтезирующих углеводные, белковые и минеральные компоненты кости, кровеносных сосудов, выстланных эндотелием, синтезирующим факторы роста сосудов (А.М. Зайдман, 1999; Maes C., 2002), инициирующие механизм реваскуляризации. Процесс остеогенеза осуществляется прямым путем на основе сформированной in vitro остеогенной ткани. Подобные свойства трансплантата позволяют осуществить полное замещение дефекта в короткие сроки. Уникальные свойства исследуемого пластического материала позволяют осуществить ксенотрансплантацию и тем самым избежать дополнительных манипуляций, связанных с забором трансплантата у пациентов.

Рецензенты:

Дровосеков М.Н., д.м.н., главный врач клиники «Доктор Стоматолог», г. Новосибирск;

Железный С.П., д.м.н., профессор, ООО «Профессорская клиника Железных»,                          г. Новосибирск.

Источник: https://science-education.ru/ru/article/view?id=23234

Лечение Костей
Добавить комментарий